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Animal Feed

Modulation of Canine Gut Microbiota by Prebiotic and Probiotic Supplements: A Long-Term In Vitro Study Using a Novel Colonic Fermentation Model

2026-07-23

Modulation of Canine Gut Microbiota by Prebiotic and Probiotic Supplements: A Long-Term In Vitro Study Using a Novel Colonic Fermentation Model

  • 저자: A. Gramenzi; Luana Clerico; Benedetta Belà; M. Di Leonardo; I. Fusaro; Giulia Pignataro
  • 출처: Animals : an open access journal from MDPI (2024)
  • DOI/링크: https://doi.org/10.3390/ani14223342
  • 연구 계열: Topics/Animal Feed
  • 정리일: 2026-09-15

TL;DR

개 장내 미생물을 모사한 M-SCIME 시험관 모델에서 프리바이오틱(Microbiotal), 프로바이오틱(L. reuteri), 병용 처리 모두 Limosilactobacillus, Bifidobacterium, Prevotella, Faecalibacterium을 유의하게 증가시켜 당분해성 발효와 부티르산 생성 개선을 시사했으며, 특히 병용 시 효과가 두드러졌다.


1. 연구 배경 및 동기

  • 다루는 문제: 장내 미생물총은 개의 면역, 소화, 병원균 방어에 중요한 역할을 하며, 프리바이오틱스와 프로바이오틱스는 이를 조절할 수 있다. 이 연구는 개 장을 모사한 시험관 발효 모델로 3가지 보충제의 장내미생물 변화를 평가했다.
  • 기존의 공백 / 왜 필요한가: 프리바이오틱스와 프로바이오틱스 병용(신바이오틱스)의 상승효과에 대한 관심이 높아지고 있으나, 개 장내 미생물총에 대한 장기적 시험관 모델 데이터는 제한적이다.

2. 관련 연구

  • 기존 연구 흐름: 기존 연구는 개 장내 미생물총이 식이 유형에 크게 영향받는다는 점과 프리바이오틱스·프로바이오틱스의 개별 조절 효과를 보고해왔다.
  • 이 논문의 위치: 인체용 SHIME 모델을 개 위장관에 맞게 조정한 SCIME(Triple-M-SCIME) 시스템으로 관강·점막 환경을 모두 반영해 2주간 3개 처리(프리바이오틱, 프로바이오틱, 병용)를 병행 비교한 연구이다.

3. 핵심 기여

  1. 인체 SHIME 모델을 개 위장관 조건(체온 39°C, 근위/원위 결장 pH 등)에 맞게 조정한 SCIME 모델 구축
  2. 관강 및 점막 미생물 환경을 동시에 모사하는 Triple-M-SCIME 설계
  3. 프리바이오틱·프로바이오틱·병용 3처리의 2주 장기 발효 비교
  4. 16S rRNA 시퀀싱, LEfSe, treeclimbR로 처리별 미생물 변화 분석

4. 제안 방법론

  • 전체 접근 논리: SCIME(대장발효 모사) 시스템을 이용해 프리바이오틱(Microbiotal)과 프로바이오틱(L. reuteri) 단독 및 병용 급여가 개의 결장 내강·점막 미생물총에 미치는 장기 영향을 평가
  • 단계:
  • 건강한 약 20kg 성견 1마리의 분변으로 접종한 Triple-M-SCIME 시스템(근위/원위 결장, 내강+점막) 구축
  • 안정화 3주 → 대조기 2주 → 처리기 2주(Microbiotal, L. reuteri DSM 32203 2×10^10 CFU/일, 병용 M+P)로 진행
  • 16S rRNA(V3-V4) Illumina 시퀀싱, 유세포계수, 알파다양성(Chao1·Shannon·Simpson), 베타다양성(DAPC) 분석
  • LEfSe(LDA>2) 및 treeclimbR로 처리군간 유의 분류군 도출

5. 실험 설정

항목 내용
대상/재료 건강한 약 20kg 성견 1마리의 분변 미생물총으로 접종한 SCIME in vitro 모델(근위·원위 결장, 내강·점막)
처리 조건 3주 안정화, 2주 대조, 2주 처리(Microbiotal 1정/일-FOS·이눌린·마이크로캡슐화 뷰티레이트·불활성화 L. reuteri NBF1 865.3mg; L. reuteri DSM 32203 2×10^10 CFU/일; 병용 M+P)
대조군 무보충 표준 배지 대조기(T0 기준)
측정 방법 16S rRNA(V3-V4) Illumina 시퀀싱, 유세포계수, 알파다양성(Chao1, Shannon, Simpson), 베타다양성(DAPC), LEfSe/treeclimbR

6. 실험 결과 분석

지표 변화(Δ) 조건 · 유의성
관찰 분류군(observed taxa) 모든 처리에서 증가, M+P 병용에서 근위결장 내강 최대 증가 처리기 vs 대조기
Shannon/Simpson 지수 전 처리에서 다양성 증가, M+P 병용이 근위결장 점막에서 가장 뚜렷 처리기
베타다양성(DAPC) 근위결장 내강에서 M+P군이 대조군과 뚜렷히 분리, Limosilactobacillus·Faecalibacterium 증가 원위결장은 변화폭 더 작음
Microbiotal 처리(근위결장) Bifidobacterium 유의 증대, Prevotella도 유의 증가 근위결장 내강

제안 기전(인과 사슬): 프리바이오틱(FOS·이눌린) → 당분해균(Bifidobacterium 등) 발효 촉진 → SCFA(아세테이트·락테이트) 생성 증가; 프로바이오틱(L. reuteri) 병용 → 유익균 집락화 상승 → 결장 미생물 다양성·군집구조 개선

7. 비판적 평가

강점

  • 관강·점막 미생물 환경을 동시에 모사하는 M-SCIME 모델 사용
  • 3개 처리군을 동일 시스템에서 병행 비교(Triple 구성)로 조건 통제 우수

한계 · 의문

  • 단일 개체(1마리) 분변 기증자 기반으로 개체 간 변이는 반영하지 못함
  • 시험관 모델로 실제 생체 내(in vivo) 효과는 추가 검증 필요
  • 대사물질(단쇄지방산 등)의 정량적 활성 분석은 후속 연구로 남김

8. 향후 연구 방향

  • 동일 보충제의 대사 활성(단쇄지방산 생성량 등)을 정량 평가하는 후속 연구 필요

9. 결론

프리바이오틱과 프로바이오틱 보충, 특히 병용 투여는 개 장내 유익균을 유의하게 증가시켜 장 건강과 미생물 다양성 증진에 기여할 가능성을 시험관 모델로 확인했다.

Keywords

canine gut microbiota, prebiotic, probiotic, synbiotic, SCIME, 16S rRNA, colonic fermentation, Lactobacillus reuteri

papercanine-gut-microbiotaprebioticprobioticsynbioticscime16s-rrna